Pracownia biologii molekularnej
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 1100-2BB21 |
Kod Erasmus / ISCED: |
13.4
|
Nazwa przedmiotu: | Pracownia biologii molekularnej |
Jednostka: | Wydział Fizyki |
Grupy: |
ZFBM - Biofizyka molekularna; przedmioty dla III roku |
Punkty ECTS i inne: |
6.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Założenia (opisowo): | Zaliczony "Wstęp do mikrobiologii i biologii molekularnej", oraz wykład "Biologia molekularna z genetyką cz I". |
Tryb prowadzenia: | w sali |
Skrócony opis: |
Celem pracowni jest nauczenie studentów samodzielnej pracy metodami inżynierii genetycznej i biologii molekularnej, w logicznym ciągu: od projektowania genetycznego konstruktu kodującego pożądane białko, poprzez wykonanie tegoż konstruktu, wprowadzenie go do bakterii, izolację i wstępną charakteryzację białkowego produktu. |
Pełny opis: |
Celem pracowni jest praktyczne zapoznanie studentów z wybranymi technikami biologii molekularnej: 1. Wybrane metody izolacji i analizy kwasów nukleinowych. 2. Enzymy restrykcyjne – jako narzędzie w inżynierii genetycznej. 3. Projektowanie konstruktów opartych na wektorach plazmidowych. 4. Amplifikacja fragmentu DNA metodą łańcuchowej reakcji polimerazy (PCR). 5. Klonowanie fragmentu DNA w E. coli na wektorze plazmidowym. 6. Uzyskiwanie rekombinowanego białka metodą nadprodukcji w komórkach bakteryjnych. 7. Ocena czystości i stężenia białek. Nakład pracy studenta: Laboratorium = 90 godzin Przygotowanie raportów = 45 godzin Samodzielne przygotowanie do ćwiczenia = 45 godzin Opracowanie wybranego artykułu naukowego = 30 godzin Razem 210 godzin. |
Literatura: |
1. P. C. Turner, A.G. McLennan, A.D. Bates, M.R.H. White, „Biologia Molekularna" z serii "Krótkie Wykłady" - PWN, Warszawa -wybrane zagadnienia 2. T.A Brown „Genomy” PWN, Warszawa – wybrane zagadnienia 3. R. Słomki (red.) „Analiza DNA” Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu, Poznań 2008 4.T.A Brown „Gene Cloning & DNA Analysis" Blackwell Publishing -wybrane zagadnienia 5. Artykuły przeglądowe polecane przez asystenta |
Efekty uczenia się: |
Po opanowaniu materiału objętego zakresem ćwiczeń student: WIEDZA 1. zna wybrane metody izolacji kwasów nukleinowych z komórek bakteryjnych, (K_W04, K_W06, K_W07) 2. zna wybrane metody analizy kwasów nukleinowych,(K_W04, K_W06, K_W07) 3. zna metodą amplifikacji fragmentu DNA techniką PCR, (K_W04, K_W06, K_W07) 4. zna wybrane metody oceny czystości i stężenia białek, (K_W04, K_W06, K_W07) 5. zna wybrane systemy ekspresji białek heterologicznych w komórkach E. coli. (K_W04, K_W06, K_W07) UMIEJĘTNOŚCI 1. potrafi izolować plazmidowe DNA metodą lizy alkalicznej, (K_U01, K_U04) 2. potrafi transformować komórki bakteryjne wektrorem plazmidowym - metodą szoku termicznego lub stosując elektoporację, (K_U01, K_U04) 3. potrafi zastosować technikę PCR do amplifikacji fragmentu DNA, (K_U01, K_U04) 4. potrafi klonować fragmenty DNA w E.coli na wektorze plazmidowym, (K_U01, K_U04) 5. potrafi uzyskiwać rekombinowane białko metodą nadprodukcji w komórkach bakteryjnych, (K_U01, K_U04) 6. potrafi oznaczyć stężenie białka w roztworze, (K_U01, K_U04) 7. potrafi ocenić czystość uzyskanego preparatu, (K_U01, K_U04) 8. potrafi interpretować wyniki przeprowadzanych doświadczeń. (K_U04, K_U09) KOMPETENCJE SPOŁECZNE 1. ma świadomość, na czy polega etyka pracy badawczej i odpowiedzialność za rzetelność uzyskiwanych wyników, (K_K04, K_K05) 2. rozumie możliwości wykorzystania technik inżynierii genetycznej w biotechnologii, medycynie, diagnostyce, kryminalistyce i w przemyśle. (K_K06, K_K07) |
Metody i kryteria oceniania: |
Oddanie kart problemowych z każdych zajęć. |
Zajęcia w cyklu "Semestr zimowy 2024/25" (zakończony)
Okres: | 2024-10-01 - 2025-01-26 |
Przejdź do planu
PN WT LAB
ŚR CZ PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 90 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Joanna Żuberek | |
Prowadzący grup: | (brak danych) | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Zaliczenie na ocenę |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Warszawski, Wydział Fizyki.